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奧林巴斯體視顯微鏡SZ61觀察斑馬魚卵胚胎活性
編輯 :

長恒榮創(chuàng)

時間 : 2025-06-10 13:41 瀏覽量 : 5

使用奧林巴斯體視顯微鏡 SZ61 觀察斑馬魚卵胚胎活性時,需結合形態(tài)學特征、動態(tài)行為及輔助技術,以下是具體的觀察方法與分析要點:


一、胚胎活性的形態(tài)學判斷

1. 胚胎整體形態(tài)特征

卵膜完整性

活性良好:卵膜透明、光滑,無破裂或凹陷,卵周隙(卵膜與胚胎間的空隙)均勻,無積液或渾濁物。

活性降低 / 死亡:卵膜發(fā)白、渾濁或破裂,卵周隙擴大且有絮狀物質沉積,胚胎與卵膜粘連。

胚胎顏色與透明度

活性良好:細胞期胚胎呈半透明狀,卵黃顆粒均勻分布,動物極(細胞密集區(qū))與植物極(卵黃區(qū))界限清晰;隨著發(fā)育,色素細胞逐漸形成(如 24h 后出現(xiàn)黑色素),顏色鮮艷且分布規(guī)則。

活性降低 / 死亡:胚胎顏色變深或發(fā)灰,卵黃顆粒凝聚、溶解或出現(xiàn)油滴狀物質,色素細胞分布紊亂或褪色。

2. 亞細胞結構動態(tài)

細胞分裂與形態(tài)

活性良好:卵裂期細胞分裂同步,卵裂球大小均勻、邊界清晰,細胞核(高倍鏡下可見反光亮點)居中;囊胚期細胞排列緊密,胚盤隆起明顯。

活性降低 / 死亡:細胞分裂停滯(如卵裂球數(shù)量不再增加),細胞邊界模糊、融合或出現(xiàn)碎片化,細胞核固縮或消失。

卵黃囊與器官原基

活性良好:原腸胚期后,卵黃囊延伸成橢圓形,頭部、體節(jié)、尾部等結構逐步分化,體節(jié)數(shù)與發(fā)育時間匹配(如 24hpf 約 25 個體節(jié)),心臟原基可見微弱搏動。

活性降低 / 死亡:卵黃囊水腫(體積膨大、透明狀),體軸彎曲或缺失,器官原基發(fā)育停滯(如無眼泡、尾芽不形成)。


二、動態(tài)行為觀察:借助 SZ61 的實時追蹤能力

1. 細胞運動與生理活動

原腸運動與細胞遷移

活性良好:原腸期(約 6hpf)可見細胞從胚盤邊緣向植物極內卷、外包,形成胚盾結構,高倍鏡下(20×-45×)可觀察到細胞偽足伸展與遷移軌跡。

活性降低 / 死亡:細胞遷移停滯,胚盾無法形成,外包過程受阻(如胚盤邊緣細胞不擴展)。

心跳與血流(后期胚胎)

活性良好:48hpf 后,在高倍鏡下(配合透射光照明)可見心臟規(guī)律性搏動(約 120-180 次 / 分鐘),卵黃囊血管網(wǎng)中紅細胞呈串珠狀流動。

活性降低 / 死亡:心跳緩慢、無節(jié)律或停止,血管網(wǎng)模糊,紅細胞聚集或不流動。

2. 應激反應檢測

觸碰 / 水流刺激反應

操作方法:用微吸管輕觸胚胎或在培養(yǎng)皿中制造微弱水流,通過 SZ61 的長工作距離(約 115mm)觀察胚胎反應。

活性良好:胚胎出現(xiàn)尾部擺動、整體收縮等逃避反應,動作迅速且有力。

活性降低 / 死亡:無反應或反應遲緩,動作微弱甚至消失。


三、輔助技術:結合染色或熒光標記增強觀察

1. 臺盼藍染色(細胞活性篩選)

原理:活細胞細胞膜完整,臺盼藍無法進入;死細胞細胞膜通透性增加,會被染成藍色。

操作步驟

將胚胎放入 0.04% 臺盼藍溶液中,室溫孵育 5-10 分鐘。

用胚胎培養(yǎng)液清洗 3 次,置于載玻片上,在 SZ61 的明場模式下觀察。

結果判斷:活性良好的胚胎細胞無藍色著色,死亡細胞或組織呈深藍色,可通過高倍鏡(20×-45×)統(tǒng)計死亡細胞比例。

2. 熒光探針標記(動態(tài)活性分析)

鈣黃綠素 - AM(Calcein-AM)染色

原理:Calcein-AM 可透過活細胞膜,被酯酶分解為綠色熒光的 Calcein,標記活細胞。

觀察方法:胚胎孵育于 1μM Calcein-AM 溶液中 30 分鐘,清洗后用 SZ61 的熒光附件(如 U-MWIB3 濾光片組)觀察,活細胞呈現(xiàn)綠色熒光,死細胞無熒光。

Hoechst 33342 染色(細胞核活性)

原理:Hoechst 可進入活細胞,與 DNA 結合發(fā)出藍色熒光,死細胞熒光更強且核形態(tài)異常(如固縮、碎片化)。

適用場景:檢測細胞凋亡或壞死,在高倍鏡下(45×)觀察細胞核熒光強度與形態(tài)。


四、SZ61 的技術優(yōu)勢與操作要點

1. 優(yōu)化觀察條件

照明模式選擇

明場(BF):適合觀察整體形態(tài)與顏色變化,配合斜射光可增強細胞邊界對比度。

暗場(DF):突出透明胚胎的細微結構(如早期卵裂球、極體),減少背景光干擾。

熒光(FL):結合上述染色技術時使用,需根據(jù)探針波長選擇濾光片(如 GFP 選 B-2A,DAPI 選 U-MNB)。

放大倍數(shù)策略

低倍(6.7×-10×):快速篩選胚胎活性,觀察整體形態(tài)、心跳及應激反應。

高倍(20×-45×):解析細胞分裂、核形態(tài)、血管細節(jié)等,需注意調節(jié)微調焦旋鈕,避免壓碎胚胎。

2. 避免人為干擾

樣本處理:轉移胚胎時使用口徑略大于卵直徑的吸管(約 0.8mm),避免機械損傷;培養(yǎng)皿中培養(yǎng)液厚度不超過 5mm,確保透光性。

環(huán)境控制:觀察過程中維持水溫 28.5℃(可使用加熱載物臺),避免溫度波動影響胚胎活性。


五、活性評估標準與數(shù)據(jù)記錄

1. 分級評估體系

活性等級 形態(tài)特征 動態(tài)行為 染色結果

高活性 卵膜透明,細胞分裂正常,器官分化完整 心跳規(guī)律,觸碰反應迅速 臺盼藍不著色,Calcein 熒光均勻

中等活性 卵膜輕度渾濁,部分細胞分裂異常,器官原基存在但發(fā)育延遲 心跳緩慢,應激反應弱 少量細胞被臺盼藍染色,熒光強度降低

低活性 / 死亡 卵膜破裂,細胞碎片化,無器官分化 無心跳,無應激反應 大量細胞藍染,無熒光

2. 數(shù)據(jù)記錄與分析

圖像記錄:使用 SZ61 配套的 DP27 相機或第三方軟件(如 CellSens)拍攝明場 / 熒光照片,標注發(fā)育時間(hpf)與放大倍數(shù)。

動態(tài)視頻:錄制原腸運動、心跳等過程(建議幀率 10fps),后期分析細胞遷移速度、心跳頻率等參數(shù)。

統(tǒng)計分析:對每組胚胎的活性率(高活性胚胎數(shù) / 總胚胎數(shù))、發(fā)育異常率進行量化,結合實驗處理(如藥物、基因敲除)探討機制。

通過上述方法,可利用奧林巴斯 SZ61 體視顯微鏡從形態(tài)、動態(tài)、分子水平綜合評估斑馬魚卵胚胎活性,為發(fā)育生物學、毒理學等研究提供直觀且準確的實驗依據(jù)。

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